一级黄色录象I 国产sm调教视频I 91超碰国产精品I 国产精品资源网站I 91精品久久久久久蜜臀I 男人的天堂av高清在线I 少妇精品视频在线观看I 亚洲午夜精品一区,二区,三区I 成人在线观看网址I 国产911网站I 国产尤物在线直播I 日韩一级欧洲I 亚洲人成自拍网站I 国产精品久久波多野结衣I 糖心vlog精品一区二区三区I 欧美午夜视频在线I 国产1区2区3区在线I 秋霞蜜臀av久久电影网免费I 国产1区2区3区精品美女I bdsm在线观看播放视频I 午夜影院福利社I 国产高清情侣在线I 成人午夜碰碰视频I 伊人婷婷激情I 久久婷婷蜜乳一本欲蜜臀I 裸体裸乳免费看I 亚洲人成人99网站I 在线视频 福利一区I 国产亚洲日本欧美韩国I 中文字幕视频在线I 国产成人一区三区I 亚洲色图国产I 成年人看片网站

    FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素熒光參數，具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點；雙鍵操作，具圖形顯示屏，內置鋰電和數據存儲，廣泛應用于研究植物的光合作用、脅迫監測、除草劑檢測或突變體篩選，還可用于生態毒理的生物檢測，如通過不同植物對土壤或水質污染的葉綠素熒光響應，找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。 FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀配備多種葉夾型號，用于不同的樣品與研究。

應用領域

 適用于光合作用研究和教學，植物及分子生物學研究，農業、林業，生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變篩選等。

· 植物光合特性研究

· 光合突變體篩選與表型研究

· 生物和非生物脅迫的檢測

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 農業和林業育種、病害檢測、長勢與產量評估

· 除草劑檢測

· 教學

功能特點：

• 結構緊湊、便攜性強，LED光源、檢測器、控制單元集成于僅手機大小的儀器內，重量僅188g
• 功能強大，是葉綠素熒光技術的結晶產品，具備了大型熒光儀的所有功能，可以測量所有葉綠素熒光參數
• 內置了所有通用葉綠素熒光分析實驗程序，包括3套熒光淬滅分析程序、3套光響應曲線程序、OJIP快速熒光動力學曲線等
• 高時間分辨率，可達10萬次每秒，自動繪出OJIP曲線并給出26個OJIP–test參數
• FluorPen專業軟件功能強大，可下載、展示葉綠素熒光參數圖表，也可以通過軟件直接控制儀器進行測量

?

• 具備無人值守自動監測功能
• 內置藍牙與USB雙通訊模塊，GPS模塊，輸出帶時間戳和地理位置的葉綠素熒光參數圖表
• 配備多種葉夾型號：固定葉夾式（適于實驗室內暗適應或夜間快速測量）、分離葉夾式（適用于野外暗適應測量）、探頭式（透明光纖探頭，具備葉片固定裝置，用于非接觸性測量監測或光適應條件下的葉綠素熒光監測）、用戶定制式等
• 可選配野外自動監測式熒光儀，防水防塵設計

測量程序與功能

· Ft：瞬時葉綠素熒光,暗適應完成后Ft＝F₀

· QY：量子產額，表示光系統II 的效率，等于Fv/Fm(暗適應狀態)或ΦPSII (光適應狀態)。

· OJIP：快速熒光動力學曲線，用于研究植物暗適應后的快速熒光動態變化

· NPQ：熒光淬滅動力學曲線，用于研究植物從暗適應到光適應狀態的熒光淬滅變化過程。

· LC：光響應曲線，用于研究植物對不同光強的熒光淬滅反應。

· PAR：光合有效輻射，測量環境中植物生長可以利用的400-700nm實際光強（限PAR型號）。

技術參數

• 測量參數包括F₀、Ft、Fm、Fm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、PAR（限PAR型號）、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多個葉綠素熒光參數，及3種給光程序的光響應曲線、3種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等
• OJIP–test時間分辨率為10µs（每秒10萬次），給出OJIP曲線和26個參數，包括F₀、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F₀、Fv/F₀、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等
• 測量程序：Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、NPQ3、LC1、LC2、LC3、PAR（限PAR型號）、Multi無人值守自動監測
• 葉夾類型：FP110/S固定葉夾式、FP110/D分離葉夾式、FP110/P探頭式、FP110/X用戶定制式

• PAR傳感器（限PAR型號）：80º入射角余弦校正，讀數單位µmol(photons)/m².s，可顯示讀數，檢測范圍400-700 nm
• 測量光：每測量脈沖0.09µmol(photons)/m².s，10-100%可調
• 光化學光：10-1000µmol(photons)/m².s可調
• 飽和光：3000µmol(photons)/m².s，10-100%可調
• 光源：標準配置藍光470nm，可根據需求配備不同波長的LED光源
• 檢測器：PIN光電二極管，667–750nm濾波器
• 尺寸大小：超便攜，手機大小，134×65×33mm，重量僅188g
• 存貯：容量16Mb，可存儲149000數據點
• 顯示與操作：圖形化顯示，雙鍵操作，待機8分鐘自動關閉
• 供電：可充電鋰電池，USB充電，連續工作48小時，低電報警
• 工作條件：0–55℃，0–95%相對濕度（無凝結水）
• 存貯條件：-10–60℃，0–95％相對濕度（無凝結水）
• 通訊方式：藍牙+USB雙通訊模式
• GPS模塊：內置
• 軟件：FluorPen1.1軟件，用于數據下載、分析和圖表顯示，輸出Excel數據文件及熒光動力學曲線圖，適用于Windows 7及更高操作系統

操作軟件與實驗結果

產地：捷克

應用案例：

    2017年4月，美國國家航空航天局（NASA）新一代*進植物培養器（Advanced Plant Habitat，APH）搭載聯盟號MS-04貨運飛船抵達空間站。宇航員使用FluorPen手持儀葉綠素熒光儀在其中開展植物生理學及太空食物種植（growth of fresh food in space）的研究。

參考文獻

• F Dang, et al. 2019. Discerning the Sources of Silver Nanoparticle in a Terrestrial Food Chain by Stable Isotope Tracer Technique. Environmental Science & Technology 53(7): 3802-3810
• N Moghimi, et al. 2019. New candidate loci and marker genes on chromosome 7 for improved chilling tolerance in sorghum. Journal of Experimental Botany 70(12): 3357–3371
• M Rafique, et al. 2019. Potential impact of biochar types and microbial inoculants on growth of onion plant in differently textured and phosphorus limited soils. Journal of Environmental Management 247: 672-680
• P Soudek, et al. 2019. Thorium as an environment stressor for growth of Nicotiana glutinosa plants. Environmental and Experimental Botany 164: 84-100
• JA Pérez-Romero, et al. 2019. Investigating the physiological mechanisms underlying Salicornia ramosissima response to atmospheric CO₂ enrichment under coexistence of prolonged soil flooding and saline excess. Plant Physiology and Biochemistry 135: 149-159
• D Shao, et al. 2019. Physiological and biochemical responses of the salt-marsh plant Spartina alterniflora to long-term wave exposure. Annals of Botany, DOI: 10.1093/aob/mcz067
• C Cirillo, et al. 2019. Biochemical, Physiological and Anatomical Mechanisms of Adaptation of Callistemon citrinus and Viburnum lucidum to NaCl and CaCl₂ Salinization. Front. Plant Sci. 10:742

附：OJIP參數及計算公式

Bckg = background

Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)